LIPOPROTEINS ELECTROPHORETIC PROCEDURE 脂蛋白电泳
Kit Ref. : SRE606K–SRE621K
⏹ 1、检测目的
脂蛋白电泳试剂盒SRE606K 和SRE621K 是通过琼脂糖凝胶电泳方法分离人血清中脂蛋白。分离后的蛋白可肉眼观察到异常结果包括变异的条带和额外增加的条带都可被检测出。通过光密度的变化可对出脂蛋白进行半定量的检测。
SRE606K 和SRE621K 试剂盒是在Interlab 全自动琼脂糖凝胶电泳系统中使用。
由于甘油三酯和胆固醇的增高程度不同，在脂蛋白电泳图谱中的显示也会不同，因此弗德里克森和李斯把“异常脂蛋白血症”分为一下六种：
脂蛋白电泳也可以应用于动脉粥样硬化和糖代谢相关疾病的评估及诊断。 ⏹ 3、原理
根据蛋白的电泳特性，他们有不同的电泳迁移率，因此可对蛋白进行分离。每个蛋白分子带电荷是由于他们带有正负电荷。净电荷定义了在一定的PH 值条件下每种蛋白质的电泳迁移特性。Interlab 的高分辨率蛋白电泳分离过程是在碱性PH 值条件下进行的琼脂糖凝胶电泳。当电泳分离过程结束后，凝胶片通过酸紫进行染色及脱色、烘干处理。通过肉眼观察带型结果来检测如肾小球性蛋白尿、肾小管性蛋白尿或混合性蛋白尿和单克隆条带，包括完整的免疫球蛋白和游离的轻链。
⏹ 3、标本准备
3.1样本的采集和处理：
按照实验室标准采集血清的方法采集血清样本。 建议使用新鲜的血清标本。
尿液样本推荐使用24小时原尿，清晨的第一次尿液也可以使用。
建议使用新鲜的尿液标本，由于样本的PH 值变化可能会引起蛋白变性。
3.2样本处理：
∙ 用生理盐水(0.9% w/v NaCl).以1：20比例稀释血清样本。
∙ 如果蛋白尿 200 mg/dL，建议用生理盐水稀释尿液样本至总蛋白浓度约
200 mg/dl。
∙ 浓缩脑脊液样本至总蛋白浓度1000 mg/dL
3.4样本应避免 ∙ ∙ ∙ ∙
4. 检测试剂
4.1名称：高分辨蛋白电泳 试剂编号：SRE607K 公司：Interlab 4.2试剂组成：
4.2.1 琼脂糖凝胶片
成分：琼脂糖、巴比妥缓冲液、防腐剂、稳定剂 应用前的准备：此胶片可直接使用。
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C ，胶片在有效期内稳定。有效期过后，勿使用此胶片。
试剂变质的标志：在胶片包装里面有液体出现；胶片的厚度不均；有细菌生长
注意：胶片必须保持水平放置；勿将此胶片冰冻保存
4.2.2 含有缓冲液的海绵
成分：含有巴比妥的碱性缓冲液及防腐剂 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C ，缓冲绵条在有效期内稳定。有效期过后，勿使用。
缓冲液：巴比妥缓冲液（PH 值为碱性）、防腐剂
试剂变性的标志：如果试剂包装已被打开或缓冲绵条是干燥的则勿使用。绵条有黑色或黄色污点出现不会影响实验结果。
4.2.3 酸性紫染液
成分：酸紫染料于浓缩的醋酸溶液中 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。浓缩液在有效期内稳定；工作液（稀释后的染液）储存时瓶盖要盖紧并在室温15︒到30︒C 条件下稳定6个月。工作液用过10次染色循环后即染过10张胶片后应不能再使用。
试剂变性的标志：无
4.2.4 点样器清洗液
成分：表面活性剂、防腐剂 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。有效期内稳定。
勿使用溶血的血清样本。溶血将导致α2区带的异常升高和或α2区带阴极端发生变化。
勿使用血浆样本。纤维蛋白原的出现很容易错误的认为是可疑性单克隆条带。
勿使用放置过久的尿液样本，尿液中会有降解的蛋白出现。
解冻和放置过久的样本因为有蛋白变性问题所以在点样位置会有印记。
4.2.5 一次性载样盘
成分：带有微孔的塑料盘 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。
4.2.6 吸水纸
成分：薄吸水纸用于吸收凝胶片中多余的水分 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。有效期内稳定。
4.2.7 脱色液 (货号: SRE201M; 不包括在此试剂盒中)
成分：柠檬酸水溶液 使用前的准备：稀释1ml SRE201M液体到1L 蒸馏水中，即1000倍稀释。 存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。浓缩液在有效期内稳定；工作液（稀释后的染液）于室温稳定2星期。
试剂变性的标志：有云雾状及黑色氧化斑点出现
安全警告
废物处理要符合当地的执行规范。
所有试剂废物的安全处理都应查阅试剂说明书有关各试剂的安全性能说明。
为了警惕和预防与耗材处理及实验过程中相关的潜在的危险性，应仔细阅读来自供应商的试剂说明书。
⏹ 5. 仪器
Interlab G26 琼脂糖全自动电泳分析仪
⏹ 6. 校准程序
该仪器无需校准
⏹ 7. 操作步骤 7.1 电泳分析设置
7.1.1 将各溶液瓶倒入一定量的相应的试剂
7.1.3 使用电泳Elfolab/Interlab软件选择要分析的电泳项目。
7.1.5 将胶片放在相应的胶片架上，在载样盘中放上金属支架。 7.1.6 按如下说明加入样本。
∙
SRE607试剂盒则在1-13号一次性载样盘中放入30μl 样品
注意：建议每次实验中应有质控样本
7.1.7 电泳槽设置 从仪器中抽出电泳槽.
打开铝质的包装，取出白色的海绵
注意：应用干净的镊子或戴上干净的手套来拾起浸泡过的海绵条。 根据胶片运行的数量，使用SRE607K 试剂盒时，应将海绵条插入到电
泳槽的两侧电极中
注意：勿将海绵条插入到中间的电极中。 将电泳槽平滑的推入仪器中。
注意：在每次分析结束后要弃去海绵条！
7.2 琼脂糖胶片的准备
7.2.1 将blotter A (Ref.: SCE602A)放置在胶片的表面以除去多余的缓冲
液，应确保吸水纸完全贴在胶片的表面，然后立刻的移走吸水纸。 注意：勿将吸水纸放置在胶片的时间中过长以避免胶片脱水 7.2.2 将胶片放置在支架中。 每个支架可容纳1张琼脂糖胶片。
1. 要保证胶片正确无误的放置在支架中。 2. 将胶片支架放置在仪器相应的位置中。
7.3 开始电泳分析
使用Elfolab/Interlab软件开始分析过程，选择将要执行分析的胶片支架的号码和胶片的位置（左、右）。小瓶中准备的新鲜的脱色液可允许使用5个胶片支架的胶片。染色液可足够分析使用10张胶片。
在开始新的分析前，应检查如下内容： ∙ 洗液槽是否用新鲜的液体充满。 ∙ 染色液是否至少为0.21L ∙ 脱色液是否至少为2.5L
∙ 废液瓶中的液体是否被倒空。
Interlab 系统自动执行样本分析的全过程：点样、电泳、凝胶变性、凝胶染色、脱色、烘干及判度。
⏹ 8. 质控操作程序
8.1 质控
推荐使用Interlab 公司的质控品，货号为SCE123A 或SCE126A 。每个实验室应为每批质控品建立相应的可接受的参数。如果质控品不在可接受的参数范围内，则此病人的检测结果是可疑的，应重新检测。 8.2 室内质控
在此试剂运输前，为了能使每个包装的试剂都符合Interlab 产品的质
控试验的结果已报告在产品质量合格证中。
⏹ 9. 干扰因素
参照样品的收集、处理及储存部分的内容。不正确的储存样本可能会导致蛋白的降解。不按照实验操作说明执行操作可能会影响实验结果。
⏹ 10. 结果计算原理
每个区带的染色后的结果，区带颜色的深浅即宽度与吸光度的结果是一致的。通过Elfolab 软件可对判读后的结果进行数据的接收和处理，如果输入了总蛋白的浓度值，可根据各区带的百分比计算出各区带的浓度值。
结果根据Interlab G26仪器内八通道投射光密度扫描，由Elfolab 软件数据分析所得。
⏹ 11. 生物参考区间
本实验是定性结果
⏹ 12. 警告、危急值
不适用
⏹ 13. 报告时间
非急诊项目，报告时间取决于标本数量。
⏹ 14. 实验室解释（临床意义）
高分辨率尿蛋白电泳可定性检测不同类型的蛋白尿 ∙ 生理性蛋白尿：白蛋白表现为微弱的条带；微弱的转铁蛋白条带也可能出现。 ∙ 肾小球性蛋白尿：
∙ 选择性：清楚可见白蛋白条带（多于蛋白尿的80％）和转铁蛋白条带。 ∙ 非选择性：尿蛋白电泳带型表现为与血清蛋白相似，与血清蛋白同一位置的
条带表现明显。尿液中条带越多，肾脏损坏的越严重。
∙ 肾小管性蛋白尿：低量的白蛋白条带，α1条带、α2条带、β条带及γ条带表
现明显。这样的带型通常被发现于以下4种情况：先天性肾小管性肾病，间歇性肾小管性肾炎、慢性肾盂肾炎和多囊肾
∙ 低丙球蛋白血症：由于是完整的免疫球蛋白分子即游离的轻链（比较普遍）
或重链，在γ区域中有一个或多条带出现。κ轻链可被发现的频率是λ轻链的2倍。在IgG 或IgA 单克隆血内球蛋白异常症状中(非多发性骨髓瘤) ，蛋白尿可能是生理性的，表现为游离的轻链（如本周氏蛋白）
高分辨率蛋白电泳带型图示
15. 安全防护措施 15.1
琼脂糖凝胶片：
吞咽有害
损坏皮肤和眼睛
一旦眼睛接触到，需立刻用大量清水清洗 一旦皮肤接触到，需立刻用大量清水清洗 如果吞咽，需立刻找医生就诊 吞咽有毒性
对皮肤及眼镜有刺激性 对水生生物有害
一旦眼睛接触到，需立刻用大量清水清洗 如果吞咽，需找医生就诊
易燃
引起严重烧伤
对眼睛、呼吸系统及皮肤有刺激作用 勿呼吸挥发气体
一旦眼睛接触到，立刻用大量清水清洗 应戴保护手套及防护眼镜 对眼睛、皮肤有刺激作用
R: 22 R: 36/38 S: 26 S: 28 S: 46 15.2
R: 25 R: 36/38 R: 52 S: 26 S: 46 15.3
R: 10 R: 35
R: 36/37/38 S: 23 S: 26 S:37/39 15.4
脱色液 R: 36/38
含有缓冲液的海绵条
酸性紫染料
S:37/39 16.1
应戴保护手套及防护眼镜
16. 主要参考文献
Interlab 公司提供的标准操作规范流程
16.2 国外参考文献，如下： ∙ Alper, C.A.
Plasma protein measurements as a diagnostic aid. N. Eng J Med, 291, 1974 ,
287-290.
∙ Ritwmann, S.E. & Daniels J.C.
Diagnostic proteinology : separation and characterization of proteins,
qualitative and quantitative assays in Laboratory medicine, Harper and Row, inc. Hagerstown, 1979. ∙ Ritzmann, S.E. Ed,
Protein abnormalities Vol.I : Physiology of immunoglobulins :
Diagnostic and clinical aspects, Allen R. Liss. Inc., New York, 1982.
∙ Mac Namara E.M. & al. Electrophoresis and densitometry of serum and
urine in the investigation and significance of monoclonal immunoglobulins. Eletrophoresis 1990, 11,376-381. ∙ Le Carrer D.
Gammapathies monoclonales : mise au point sur leur exploration
biochimi que en 1991. L'eurobiologiste 1991 tome XXV, n° 195. ∙ Keshgegian A.A. Oligoclonal banding in sera of hospitalised patients.
clin chem vol.38 n° 1, 1992, 169.-168
∙ Seftor R.E.B. electrophoretic analysis of proteins associated with
tumor cell invasion. electrophoresis, 1994, 15, 454-462.
LIPOPROTEINS ELECTROPHORETIC PROCEDURE 脂蛋白电泳
Kit Ref. : SRE606K–SRE621K
⏹ 1、检测目的
脂蛋白电泳试剂盒SRE606K 和SRE621K 是通过琼脂糖凝胶电泳方法分离人血清中脂蛋白。分离后的蛋白可肉眼观察到异常结果包括变异的条带和额外增加的条带都可被检测出。通过光密度的变化可对出脂蛋白进行半定量的检测。
SRE606K 和SRE621K 试剂盒是在Interlab 全自动琼脂糖凝胶电泳系统中使用。
由于甘油三酯和胆固醇的增高程度不同，在脂蛋白电泳图谱中的显示也会不同，因此弗德里克森和李斯把“异常脂蛋白血症”分为一下六种：
脂蛋白电泳也可以应用于动脉粥样硬化和糖代谢相关疾病的评估及诊断。 ⏹ 3、原理
根据蛋白的电泳特性，他们有不同的电泳迁移率，因此可对蛋白进行分离。每个蛋白分子带电荷是由于他们带有正负电荷。净电荷定义了在一定的PH 值条件下每种蛋白质的电泳迁移特性。Interlab 的高分辨率蛋白电泳分离过程是在碱性PH 值条件下进行的琼脂糖凝胶电泳。当电泳分离过程结束后，凝胶片通过酸紫进行染色及脱色、烘干处理。通过肉眼观察带型结果来检测如肾小球性蛋白尿、肾小管性蛋白尿或混合性蛋白尿和单克隆条带，包括完整的免疫球蛋白和游离的轻链。
⏹ 3、标本准备
3.1样本的采集和处理：
按照实验室标准采集血清的方法采集血清样本。 建议使用新鲜的血清标本。
尿液样本推荐使用24小时原尿，清晨的第一次尿液也可以使用。
建议使用新鲜的尿液标本，由于样本的PH 值变化可能会引起蛋白变性。
3.2样本处理：
∙ 用生理盐水(0.9% w/v NaCl).以1：20比例稀释血清样本。
∙ 如果蛋白尿 200 mg/dL，建议用生理盐水稀释尿液样本至总蛋白浓度约
200 mg/dl。
∙ 浓缩脑脊液样本至总蛋白浓度1000 mg/dL
3.4样本应避免 ∙ ∙ ∙ ∙
4. 检测试剂
4.1名称：高分辨蛋白电泳 试剂编号：SRE607K 公司：Interlab 4.2试剂组成：
4.2.1 琼脂糖凝胶片
成分：琼脂糖、巴比妥缓冲液、防腐剂、稳定剂 应用前的准备：此胶片可直接使用。
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C ，胶片在有效期内稳定。有效期过后，勿使用此胶片。
试剂变质的标志：在胶片包装里面有液体出现；胶片的厚度不均；有细菌生长
注意：胶片必须保持水平放置；勿将此胶片冰冻保存
4.2.2 含有缓冲液的海绵
成分：含有巴比妥的碱性缓冲液及防腐剂 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C ，缓冲绵条在有效期内稳定。有效期过后，勿使用。
缓冲液：巴比妥缓冲液（PH 值为碱性）、防腐剂
试剂变性的标志：如果试剂包装已被打开或缓冲绵条是干燥的则勿使用。绵条有黑色或黄色污点出现不会影响实验结果。
4.2.3 酸性紫染液
成分：酸紫染料于浓缩的醋酸溶液中 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。浓缩液在有效期内稳定；工作液（稀释后的染液）储存时瓶盖要盖紧并在室温15︒到30︒C 条件下稳定6个月。工作液用过10次染色循环后即染过10张胶片后应不能再使用。
试剂变性的标志：无
4.2.4 点样器清洗液
成分：表面活性剂、防腐剂 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。有效期内稳定。
勿使用溶血的血清样本。溶血将导致α2区带的异常升高和或α2区带阴极端发生变化。
勿使用血浆样本。纤维蛋白原的出现很容易错误的认为是可疑性单克隆条带。
勿使用放置过久的尿液样本，尿液中会有降解的蛋白出现。
解冻和放置过久的样本因为有蛋白变性问题所以在点样位置会有印记。
4.2.5 一次性载样盘
成分：带有微孔的塑料盘 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。
4.2.6 吸水纸
成分：薄吸水纸用于吸收凝胶片中多余的水分 使用前的准备：直接使用
存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。有效期内稳定。
4.2.7 脱色液 (货号: SRE201M; 不包括在此试剂盒中)
成分：柠檬酸水溶液 使用前的准备：稀释1ml SRE201M液体到1L 蒸馏水中，即1000倍稀释。 存储和稳定性：储存在室温15︒到30︒C 。浓缩液在有效期内稳定；工作液（稀释后的染液）于室温稳定2星期。
试剂变性的标志：有云雾状及黑色氧化斑点出现
安全警告
废物处理要符合当地的执行规范。
所有试剂废物的安全处理都应查阅试剂说明书有关各试剂的安全性能说明。
为了警惕和预防与耗材处理及实验过程中相关的潜在的危险性，应仔细阅读来自供应商的试剂说明书。
⏹ 5. 仪器
Interlab G26 琼脂糖全自动电泳分析仪
⏹ 6. 校准程序
该仪器无需校准
⏹ 7. 操作步骤 7.1 电泳分析设置
7.1.1 将各溶液瓶倒入一定量的相应的试剂
7.1.3 使用电泳Elfolab/Interlab软件选择要分析的电泳项目。
7.1.5 将胶片放在相应的胶片架上，在载样盘中放上金属支架。 7.1.6 按如下说明加入样本。
∙
SRE607试剂盒则在1-13号一次性载样盘中放入30μl 样品
注意：建议每次实验中应有质控样本
7.1.7 电泳槽设置 从仪器中抽出电泳槽.
打开铝质的包装，取出白色的海绵
注意：应用干净的镊子或戴上干净的手套来拾起浸泡过的海绵条。 根据胶片运行的数量，使用SRE607K 试剂盒时，应将海绵条插入到电
泳槽的两侧电极中
注意：勿将海绵条插入到中间的电极中。 将电泳槽平滑的推入仪器中。
注意：在每次分析结束后要弃去海绵条！
7.2 琼脂糖胶片的准备
7.2.1 将blotter A (Ref.: SCE602A)放置在胶片的表面以除去多余的缓冲
液，应确保吸水纸完全贴在胶片的表面，然后立刻的移走吸水纸。 注意：勿将吸水纸放置在胶片的时间中过长以避免胶片脱水 7.2.2 将胶片放置在支架中。 每个支架可容纳1张琼脂糖胶片。
1. 要保证胶片正确无误的放置在支架中。 2. 将胶片支架放置在仪器相应的位置中。
7.3 开始电泳分析
使用Elfolab/Interlab软件开始分析过程，选择将要执行分析的胶片支架的号码和胶片的位置（左、右）。小瓶中准备的新鲜的脱色液可允许使用5个胶片支架的胶片。染色液可足够分析使用10张胶片。
在开始新的分析前，应检查如下内容： ∙ 洗液槽是否用新鲜的液体充满。 ∙ 染色液是否至少为0.21L ∙ 脱色液是否至少为2.5L
∙ 废液瓶中的液体是否被倒空。
Interlab 系统自动执行样本分析的全过程：点样、电泳、凝胶变性、凝胶染色、脱色、烘干及判度。
⏹ 8. 质控操作程序
8.1 质控
推荐使用Interlab 公司的质控品，货号为SCE123A 或SCE126A 。每个实验室应为每批质控品建立相应的可接受的参数。如果质控品不在可接受的参数范围内，则此病人的检测结果是可疑的，应重新检测。 8.2 室内质控
在此试剂运输前，为了能使每个包装的试剂都符合Interlab 产品的质
控试验的结果已报告在产品质量合格证中。
⏹ 9. 干扰因素
参照样品的收集、处理及储存部分的内容。不正确的储存样本可能会导致蛋白的降解。不按照实验操作说明执行操作可能会影响实验结果。
⏹ 10. 结果计算原理
每个区带的染色后的结果，区带颜色的深浅即宽度与吸光度的结果是一致的。通过Elfolab 软件可对判读后的结果进行数据的接收和处理，如果输入了总蛋白的浓度值，可根据各区带的百分比计算出各区带的浓度值。
结果根据Interlab G26仪器内八通道投射光密度扫描，由Elfolab 软件数据分析所得。
⏹ 11. 生物参考区间
本实验是定性结果
⏹ 12. 警告、危急值
不适用
⏹ 13. 报告时间
非急诊项目，报告时间取决于标本数量。
⏹ 14. 实验室解释（临床意义）
高分辨率尿蛋白电泳可定性检测不同类型的蛋白尿 ∙ 生理性蛋白尿：白蛋白表现为微弱的条带；微弱的转铁蛋白条带也可能出现。 ∙ 肾小球性蛋白尿：
∙ 选择性：清楚可见白蛋白条带（多于蛋白尿的80％）和转铁蛋白条带。 ∙ 非选择性：尿蛋白电泳带型表现为与血清蛋白相似，与血清蛋白同一位置的
条带表现明显。尿液中条带越多，肾脏损坏的越严重。
∙ 肾小管性蛋白尿：低量的白蛋白条带，α1条带、α2条带、β条带及γ条带表
现明显。这样的带型通常被发现于以下4种情况：先天性肾小管性肾病，间歇性肾小管性肾炎、慢性肾盂肾炎和多囊肾
∙ 低丙球蛋白血症：由于是完整的免疫球蛋白分子即游离的轻链（比较普遍）
或重链，在γ区域中有一个或多条带出现。κ轻链可被发现的频率是λ轻链的2倍。在IgG 或IgA 单克隆血内球蛋白异常症状中(非多发性骨髓瘤) ，蛋白尿可能是生理性的，表现为游离的轻链（如本周氏蛋白）
高分辨率蛋白电泳带型图示
15. 安全防护措施 15.1
琼脂糖凝胶片：
吞咽有害
损坏皮肤和眼睛
一旦眼睛接触到，需立刻用大量清水清洗 一旦皮肤接触到，需立刻用大量清水清洗 如果吞咽，需立刻找医生就诊 吞咽有毒性
对皮肤及眼镜有刺激性 对水生生物有害
一旦眼睛接触到，需立刻用大量清水清洗 如果吞咽，需找医生就诊
易燃
引起严重烧伤
对眼睛、呼吸系统及皮肤有刺激作用 勿呼吸挥发气体
一旦眼睛接触到，立刻用大量清水清洗 应戴保护手套及防护眼镜 对眼睛、皮肤有刺激作用
R: 22 R: 36/38 S: 26 S: 28 S: 46 15.2
R: 25 R: 36/38 R: 52 S: 26 S: 46 15.3
R: 10 R: 35
R: 36/37/38 S: 23 S: 26 S:37/39 15.4
脱色液 R: 36/38
含有缓冲液的海绵条
酸性紫染料
S:37/39 16.1
应戴保护手套及防护眼镜
16. 主要参考文献
Interlab 公司提供的标准操作规范流程
16.2 国外参考文献，如下： ∙ Alper, C.A.
Plasma protein measurements as a diagnostic aid. N. Eng J Med, 291, 1974 ,
287-290.
∙ Ritwmann, S.E. & Daniels J.C.
Diagnostic proteinology : separation and characterization of proteins,
qualitative and quantitative assays in Laboratory medicine, Harper and Row, inc. Hagerstown, 1979. ∙ Ritzmann, S.E. Ed,
Protein abnormalities Vol.I : Physiology of immunoglobulins :
Diagnostic and clinical aspects, Allen R. Liss. Inc., New York, 1982.
∙ Mac Namara E.M. & al. Electrophoresis and densitometry of serum and
urine in the investigation and significance of monoclonal immunoglobulins. Eletrophoresis 1990, 11,376-381. ∙ Le Carrer D.
Gammapathies monoclonales : mise au point sur leur exploration
biochimi que en 1991. L'eurobiologiste 1991 tome XXV, n° 195. ∙ Keshgegian A.A. Oligoclonal banding in sera of hospitalised patients.
clin chem vol.38 n° 1, 1992, 169.-168
∙ Seftor R.E.B. electrophoretic analysis of proteins associated with
tumor cell invasion. electrophoresis, 1994, 15, 454-462.